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酶譜的特點是無論是否有活性都被顯示

發布日期:2017-06-30

蛋白酶在合適的折疊狀態下,比如前體MMP包括有“半胱氨酸-梓指鍵”,即半胱氨酸開關。將樣品與含有SDS的緩沖液混合后,蛋白酶由于SDS帶有大量負電荷而展開。去國外看病愛諾美康介紹,樣品在聚合有明膠的聚丙烯酰胺凝膠中上樣,電泳開始后蛋白質跑向陽極,隨分子量大小而逐漸分開。

iv電泳后,膠上SDS被洗去,從而使得蛋白質在膠上的遷移位置重新折疊,但是半胱氨酸-鋅指鍵無法恢復,即使原來前體MMP也被激活。(v)將膠放人含有Ca2+的反應緩沖液中,37T下孵育,水解反應發生。在反應液中加人EDTA則可以防止金屬離子依賴的蛋白酶水解反應。(vi)膠經過考馬斯亮藍染色后,除了已經被MMP水解的區域,明膠會顯示較深的顏色。條帶的大小由分子量標記物決定,從而鑒定出MMP。右邊的膠是經過EDTA孵育的,從而確認條帶缺失是MMP。樣本來自特定培養條件下增長期的HT1080纖維肉瘤細胞系,一般在酶譜法中用作陽性對照。

酶譜的特點是無論是否有活性都被顯示

去國外看病愛諾美康介紹,有一點值得注意,酶譜的特點是無論蛋白酶是否有活性,都能被顯示出來。跑膠時蛋白質發生解構,導致“半胱氨酸開關”被啟動,MMP前體在前結構域水解裂解后被激活。激活后的蛋白酶,其分子量大小比相應的酶前體約小10 000。例如,對應MMP-9只有一條條帶,而對應MMP-2有兩條條帶。MMP-9在分子量92 000處的條帶,相當于無活性的或前體MMP-9,因此在所研究的該生物樣品中尚未激活。

MMP-2的兩條條帶分別對應分子量72 000處的無活性的,或前體MMP-2以及分子量62 000處的活化MMP-2。該生物樣品經分析后,只有活性的MMP-2能夠發揮酶的功能。然而,應當記住,如果激活后的MMP-2分子處于有TIMP或人工合成的MMP抑制劑的環境下,則酶的活性會受到抑制。因為酶和抑制劑之間的相互作用主要是非共價鍵形式,復合體在電泳過程中解離后,酶才表現出活性。

去國外看病愛諾美康介紹,凝膠酶譜已成為確定MMPs存在的有效方法,不需要特異性抗體,但它仍有一些缺點。其一是這種識別是建立在多種孵育條件(中性pH值,金屬離子)及分子大小的基礎上。這并不是一個無懈可擊的系統,需要用其他方法核實確認MMP的條帶。另一個問題是,由于跑膠前必須將組織樣品做均一化處理,一些局部信息會隨之丟失。

因此,原位酶譜技術的研發就是為了提供發揮酶活性的局部組織信息。其簡單的形式就是將底物覆蓋到冰凍組織切片上,該底物作為一個可見的標記變化在原位顯示出來。早期的底物包括感光乳劑,其中包含明膠。熒光基團標記的熒光底物常使用,如明膠或膠原蛋白。染料淬火是常用的方法,該方法中的蛋白質分子相鄰的熒光基團濃度很高,可干擾熒光釋放。但可提供尋找信號的優勢——熒光釋放,可以確認蛋白水解發生的區域。這些原位技術的主要缺點是缺乏特異性,因此具體是何種蛋白酶的活動,存在不確定性。

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愛諾美康翻譯部 ? 譯